RAA等溫擴增試劑盒作為分子檢測的產品，其快速、靈敏的特性使其廣泛應用于現場快檢與基層診斷。然而，在實際操作中，常因污染、試劑失效或操作不當導致假陰性、非特異擴增或結果異常。掌握
RAA等溫擴增常見問題的診斷與解決方法，是確保其結果可信的關鍵。
1.全部樣本無擴增信號（假陰性）
先檢查陽性對照是否有效擴增。若陽性對照也無信號，可能是：
試劑失效：確認試劑是否在有效期內，運輸與儲存是否全程–20℃避光保存；
酶活性喪失：RAA酶混合液對溫度敏感，反復凍融或室溫放置過久會導致失活，應現配現用；
擴增溫度不準：使用校準過的恒溫設備，確保溫度穩定在39±1℃；
模板質量問題：重新提取核酸，避免抑制物（如酚、乙醇）殘留。
2.陰性對照出現擴增（假陽性）
表明存在交叉污染。立即停止實驗，清潔工作臺、移液器與離心機。更換新槍頭、耗材與試劑批次。嚴格執行“三區分離”，擴增后產物嚴禁在前處理區打開。建議使用防污染的UNG酶體系試劑盒。
3.擴增曲線延遲或熒光值偏低
可能因模板量不足或引物效率低。增加模板加入量（不超過總反應體積10%），或優化引物濃度。檢查引物與探針是否正確復溶并混勻。確保反應體系無氣泡，影響熱傳導。
4.出現非特異性條帶或多重信號
多因引物設計不佳或反應溫度偏高。驗證引物特異性，必要時重新設計。降低反應溫度至37℃，縮短擴增時間。優化Mg濃度（可通過調整緩沖液比例調節）。
5.試紙條法T線微弱或不顯色
檢查擴增產物是否充分變性（通常需95℃加熱5分鐘）。確認試紙條是否在有效期內，儲存是否干燥。滴加樣本量是否足夠（通常5–10μL）。避免用手接觸試紙條檢測區。
6.反應管內出現沉淀或渾濁
可能是Mg過量或蛋白析出。檢查緩沖液是否準確加入，避免重復添加。輕微渾濁不影響結果，但嚴重沉淀需重做。
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